Анализ спермиев методом днк комет. Способ обработки и анализа изображений кометоподобных объектов, полученных методом "днк-комет"

26.02.2022 | Автокредит

Метод гель-электрофореза отдельных клеток или метод ДНК-комет является высокочувствительным и обеспечивает высокую надежность получаемых результатов, в то же время относительно прост и быстро выполним, а также является стандартизованным на международном уровне (OECD № 489). Данный метод является наиболее перспективным для решения следующих задач:

Биомониторинг человека и окружающей среды, то есть выявление последствий индуцированного мутагенеза при контакте человека с ксенобиотиками (лекарственными средствами, пищевыми добавками, пестицидами, парфюмерно-косметическими средствами, бытовой химии, а также наиболее широко распространенными загрязнителями воды, воздуха и производственные вредности, наноматериалы);

Исследование в области онкологии;

Исследования систем репарации ДНК;

Метод основан на регистрации различной подвижности в постоянном электрическом поле поврежденной ДНК и/или фрагментов ДНК индивидуальных лизированных клеток, заключенных в тонкий агарозный гель на стандартном предметном стекле. При этом ДНК клетки мигрирует, формируя электрофоретический след, визуально напоминающий "хвост кометы", параметры которого зависят от степени поврежденности ДНК. После завершения электрофореза стекла красят и анализируют, используя флуоресцентную микроскопию.

Получение изображения и обработку данных осуществляют с помощью программно-аппаратного комплекса, включающего в себя высокочувствительную камеру, совмещенную с микроскопом, и специализированное программное обеспечение.

Универсальное интеллектуальное программное обеспечение, входящее в данный комплекс, обеспечивает:

Автоматизацию анализа изображений ДНК-комет «одним нажатием клавиши», включает все основные параметры измерения в том числе % ДНК в хвосте кометы;

- высокую воспроизводимость;

Анализ параметров ДНК-комет проводится и в режиме «реального времени» и с сохраненных цифровых изображений;

Программа производит обработку данных и выводит их в виде протокола в соответствии с международными требованиями GLP;

Анализ и сравнение данных;

Программа полностью валидирована и соответствует международными требованиями GLP. Имеет иерархический доступ и систему защиты данных.

В комплект входят:

1. Микроскоп люминесцентный медико-биологиче ский Nikon Eclipse Ni-E.

2. Эпи-флюоресцентная осветительная система мощностью 50W, комплекты фильтр-дихроично е зеркало-фильтр для красителей DAPI, FITC, TRITC.

3. Монохромная CCD IEEE1394 FireWire видеокамера для люминесценции. Basler Scout scA1300-32fm. Размер пиксела - 3.75 µm x 3.75 µm. Разрешение - 1296 px x 966 px. Размер сенсора 1/3 дюйма. Матрица - Sony. Передача данных через высокоскоростной порт - 1394 BUS. Скорость отображения кадров при максимальном разрешении - 32кадра/сек. Обеспечивает работу с объектами в режиме реального времени

4. Comet Assay IV - программный пакет для Windows с генератором электронных таблиц для Microsoft Excel, для работы с монохромной CCD IEEE1394 FireWire видеокамерой в режиме реального времени (змерения и анализ возможно как на видеопотоке так и на фотографиях), инструкция по эксплуатации и компакт диск для инсталляции и валидации программы.

5. Лицензия на срок один год для четырех пользователей.

6. Дистанционное обучение через сеть Internet четырех пользователей.

Дополнительно предлагется:

1. Оператор данных для использования Comet Assay IV в XML версиях баз данных для поиска фильтрации и извлечения данных и аудита через защищенную базу данных Oracle с сохранением в формате MS Excel для работы в электронных таблицах. Включает возможность просмотра авто-сохраненных изображений, подписей, архивных данных и данных авто-аудита. Дополнительно включает в себя возможность экспорта в XML формат неподписанных и подписанных цифровой подписью данных. Включает в себя Крипто-Ключ-Пров одник для просмотра подписанных цифровыми подписями данных в различных форматах.

2. Менеджер доступа к системе GLP. Access Manager это программа для контроля и управления доступом сотрудников к базам данных. Унифицированная для PI генетической токсикологии система. Включает в себя комплексный аудит системы. Внешний аудит. Администрировани е учетных записей пользователей и пользовательской деятельности, связанной программами, доступа, паролей, ревизии и т.д. Использует Oracle, для надежной защиты пользователей и данных аудита. Полное соответствие требованиям FDA 21 CFR Part 11 окончательные правила для электронных записей и электронных подписей.

3. Обучение одного пользователя на базе Perceptive instruments в Великобритании

Проведено изучение показателей фрагментации ДНК методом ДНК-комет в щелочной модификации в условиях разного уровня воздействия радиационного фактора в бытовых условиях. Проведен учет объемной активности (ОА) радона, мощности амбиентной эквивалентной дозы (МАЭД) гамма-излучения и плотности потока бета-излучения. Среднее значение ОА радона в воздухе помещений составило 89,4 Бк/м3, значение МАЭД гамма-фона составило 0,12 мкЗв/ч, плотность потока бета-излучения 0,6 с-1. Средний уровень фрагментации ДНК составил 3,48%. Уровень фрагментации ДНК по 3 показателям (доля ДНК в хвосте кометы, длина хвоста кометы, момент хвоста кометы) был повышен у мужчин, но данная тенденция не достигала статистической значимости. Показатели ДНК-комет не отличались значимо в зависимости от изменения уровня радона. Была обнаружена положительная корреляция показателей ДНК-комет с увеличением мощности гамма-излучения. При этом МАЭД гамма-излучения находилась в пределах допустимых норм во всех обследованных помещениях.

ионизирующее излучение

днк-кометы

щелочная модификация днк-комет

эффекты низких доз облучения

1. Robertson A., Allen J., Laney R., Curnow A. The cellular and molecular carcinogenic effects of radon exposure: a review // Int. J. Mol. Sci., 2013, vol. 14, no. 7, pp. 14024-14063.

2. Druzhinin V.G., Sinitsky M.Y., Larionov A.V. et al. Assessing the level of chromosome aberrations in peripheral blood lymphocytes in long-term resident children under conditions of high exposure to radon and its decay products // Mutagenesis, 2015, vol. 30, pp. 677–683.

3. Singh N.P., McCoy M.T., Tice R.R., Schneider E.L. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells // Exp. Cell Res., 1988, vol. 175, pp. 184–191.

4. Azqueta A., Gutzkow K.B., Brunborg G., Collins A.R. Towards a more reliable comet assay: optimising agarose concentration, unwinding time and electrophoresis conditions // Mutat. Res., 2011, vol. 724, no. 1–2, pp. 41-45.

5. Konca K., Lankoff A., Banasik A. et al. A cross platform public domain PC image analysis program for the comet assay // Mutation Research, 2003, vol. 534, pp. 15-20.

6. Glantz S.A. Primer of Biostatistics / S.A. Glantz. – McGraw-Hill Medical, 7 edition, 2011. – 320 p.

7. Georgakilas A.G., O’Neill P., Stewart R.D. Induction and repair of clustered DNA lesions: what do we know so far? // Radiat. Res., 2013, vol. 180, pp. 100–109.

8. Kaur S., Sangeeta, Galhna K.K., Gautam N. Assessment of radiation induced DNA damage in human peripheral blood lymphocytes using COMET assay // Int. J. Life Sci. Scientifi. Res., 2017, vol. 3, no. 4, pp. 1208-1214.

9. Miklos M., Gajski G., Garaj-Vrhovac V. Usage of the standard and modified comet assay in assessment of DNA damage in human lymphocytes after exposure to ionizing radiation // Radiology and Oncology, 2009, vol. 43, no. 2, pp. 97-107.

10. Batar B., Guven M., Baris S. et al. DNA repair gene XPD and XRCC1 polymorphisms and the risk of childhood acute lymphoblastic leukemia // Leuk. Res., 2009, vol. 33. pp. 759–763.

11. Jiang J., Zhang X., Yang H., Wang W. Polymorphisms of DNA repair genes: ADPRT, XRCC1, and XPD and cancer risk in genetic epidemiology // Meth. Mol. Biol., 2009, vol. 471. pp. 305–333.

12. Larionov A.V., Sinitsky M.Yu., Druzhinin V.G. et al. DNA excision repair and double-strand break repair gene polymorphisms and the level of chromosome aberration in children with long-term exposure to radon // Int. J. Radiat. Biol., 2016, vol. 92, no. 8, pp. 466-474.

13. Wojewodzka M., Kruszewski M., Iwanenko T. et al. Lack of adverse effect of smoking habit on DNA strand breakage and base damage, as revealed by the alkaline comet assay // Mutat. Res., 1999, vol. 440, pp. 19–25.

14. Geric M., Gajski G., Orescanin V., Garaj-Vrhovac V. Seasonal variations as predictive factors of the comet assay parameters: a retrospective study // Mutagenesis, 2017, doi:10.1093/mutage/gex023.

Воздействие радона хорошо изучено в диапазоне высоких концентраций. Установленные гигиенические нормативы предусматривают уровень эквивалентной равновесной объемной активности (ЭРОА) в 200 Бк/м3 как границу допустимой объемной активности радона в воздухе жилых помещений. В то же время в ряде стран допустимый уровень увеличен до 400 Бк/м3, что объясняется, прежде всего, геологическими особенностями территории. С другой стороны, существует точка зрения о необходимости снижения допустимого уровня до 2 пКю/л, что соответствует 74 Бк/м3. В рамках современной парадигмы ВОЗ и принципа линейного беспорогового увеличения радиационных эффектов даже небольшое радиационное воздействие приводит к увеличению риска возникновения стохастических эффектов (прежде всего онкозаболеваний).

Очевидно, что небольшие радиационные эффекты, воздействующие на большие группы людей, могут приводить к социально значимому увеличению частоты онкологической заболеваемости . Вследствие этого представляется крайне актуальным накопление информации об эффектах действия различных типов ионизирующего излучения в малых дозах, которому подвержено в той или иной степени все население планеты. Увеличение ЭРОА радона выше 200 Бк/м3 признается нежелательным для большинства принятых нормативов в области радиационной гигиены. В то же время лишь 5-10% жилых помещений можно отнести к помещениям с таким уровнем воздействия. Уровень объемной активности (ОА) радона в 2 пКю/л (74 Бк/м3) и выше может отмечаться в 20-50% жилых помещений в зависимости от типа застройки и географического расположения. Очевидно, что даже малоинтенсивное воздействие радона может приводить к значимому увеличению заболеваемости, учитывая глобальные масштабы проблемы. Представляется актуальным исследование влияния низкодозовых нагрузок плотноионизирующего излучения на организм человека.

Радон признается в настоящее время одним из наиболее опасных канцерогенов, действующих на человека. В природе радиационный радоновый фактор не играет существенной роли, поскольку газ радон рассеивается в большом объеме воздуха и достаточно быстро распадается (период полураспад Rn222=3,82 суток). В то же время жилые и технические постройки представляют собой своеобразные ловушки, накапливающие радон (до 10 крат в сравнении с открытым воздухом). Очаги выделения радона часто располагаются спорадически, радон рассматривается в качестве ведущей причины повышения частоты хромосомных аберраций в схожих экспонированных группах .

Одним из эффективных методов биомониторинга является прямая оценка степени повреждения ДНК в клетках крови методом «ДНК-комет» (гель-электрофорез отдельных клеток). Данный метод предусматривает лизис клеток, помещенных в агарозный гель, при этом ДНК мигрирует в электрическом поле. Клетки с увеличенной частотой двойных разрывов характеризуются увеличением миграции ДНК к аноду. В 1988 году в работе Singh и коллег была предложена щелочная модификация метода, включающая этап лизиса при рН>13 . Данная версия значительно повышает чувствительность метода, позволяя выявлять одиночные разрывы, щелочелабильные сайты, сшивки ДНК-ДНК и ДНК-белок, а также сайты незавершенной репарации . Поскольку для большинства генотоксикантов преобладают эффекты одиночных разрывов ДНК, щелочная модификация метода позволила существенно увеличить информативность и чувствительность теста. Одно из главных преимуществ - возможность выявить генотоксическое воздействие в условиях одновременного действия цитотоксических факторов, которые приводят к формированию хромосомных нарушений, но не обладают генотоксическим действием. В условиях рН>12 ДНК денатурирует, и нити расплетаются вследствие разрушения водородных связей между 2 спиралями. При достижении рН 12,6 щелочелабильные сайты, например апуриновые/апиримидиновые сайты, трансформируются в одиночные разрывы ДНК. При рН>13 достигается максимальная степень трансформации щелочелабильных сайтов.

Материалы и методы

Характеристика выборки

Каждый обследованный заполнял персональную анкету, включавшую информацию о возрасте, состоянии здоровья, употреблении табака и алкоголя, производственных вредностях, рентгенодиагностических процедурах, авиаперелетах, прививках и приемах лекарственных препаратов в течение 3 месяцев, предшествующих обследованию. Была отобрана группа из 39 обследованных, не подвергавшихся потенциально генотоксическим факторам. Все обследованные были не старше 40 лет. Всего было обследовано 18 мужчин (средний возраст 29 лет) и 21 женщина (средний возраст 31 год).

Исследование проводили в соответствии с требованиями Комиссии по этике Кемеровского государственного университета, протокол исследования утвержден на заседании Комиссии № 4 от 10.10.2016 г. Каждый участник подписывал форму информированного согласия, содержащую информацию о целях исследования.

Образцы биоматериала

Образцы венозной крови собирались в вакуумные пробирки емкостью 4 мл, содержащие натрий-ЭДТА в качестве антикоагулянта. Сбор материала происходил в период с ноября 2016 г. по апрель 2017 г. В течение 1-2 часов образцы переправлялись лабораторию. Все образцы кодировались и обрабатывались. Выполнение метода «ДНК-комет» начиналось немедленно после поступления образцов.

Гель-электрофорез отдельных клеток (метод «ДНК-комет»)

Метод «ДНК-комет» выполнялся в щелочной модификации, разработанной Singh с коллегами . Первый слой геля представлял собой 1% раствор стандартной агарозы (Applichem, США). Для нанесения клеток использовали 1% агарозу с низкой температурой плавления (low melting point agarose, Applichem, США) при 39 °С. 70 мкл взвеси клеток крови в легкоплавкой агарозе вносили на стекло со стандартной агарозой и помещали на лед до полного застывания геля. После застывания стекла помещали в лизирующий буфер при температуре 4 °С на 12 часов. Состав лизирующего буфера: 2,5 моль/л NaCl («Вектон», Россия), 0,1 моль/л Nа2ЭДТА («Вектон», Россия), 1% Тriton Х-100 (Amresco, США), 10% ДМSO («Вектон», Россия). После лизиса проводился горизонтальный электрофорез (300 мА, 25 В, 30 мин.) в щелочном буфере (pH>13). Электрофорезу предшествовала 20-мин. обработка щелочным буфером (300 мМ NaOH («Вектон», Россия), 1 мМ Nа2ЭДТА («Вектон», Россия). Лизис и электрофорез проводился при 4 °С при отсутствии прямых солнечных лучей. После электрофореза стекла троекратно нейтрализовали в фосфатно-солевом буфере PBS рН 7,5 (Amresco, США). После этого стекла обрабатывались 70% этанолом в течение 5 минут. Препараты высушивались и окрашивались 50 мкл однократного SYBR GREEN («Биотех-Индустрия», Россия).

Анализ «комет»

Оценка параметров фрагментации проводилась путем микрофотографирования препаратов, окрашенных SYBR GREEN, с помощью микроскопа Zeiss Axio Imager 2. Всего фотографировалось 100 случайно отобранных комет от каждого исследованного образца при увеличении х400. Последующая обработка фотографий проведена с помощью комплекта ПО CASP . Рассчитывались параметры длины хвоста кометы, момента хвоста, а также доля ДНК в хвосте кометы.

Статистические методы

Статистический анализ данных проводили с использованием пакета Statistica 10.0. Для количественных показателей рассчитывались средние значения и пределы 95% доверительного интервала (CI 95). Сравнение групп выполняли с использованием U-теста Манна-Уитни. Степень значимости была принята на уровне 5%. Корреляцию между показателями для случая непараметрических данных рассчитывали с использованием коэффициента корреляции Пирсона для рангов. При этом для выборок более 50 человек также рассчитывали значение критерия Стьюдента, основанное на значении коэффициента корреляции Пирсона .

Результаты

Доля ДНК в хвосте кометы не превышала 15%. Среднее значение объемной активности (ОА) радона в воздухе помещений составило 89,4 Бк/м3, значение МАЭД гамма-фона составило 0,12 мкЗв/ч, плотность потока бета-излучения 0,6 с-1. Уровень фрагментации ДНК по 3 показателям был повышен у мужчин, но данная тенденция не достигала статистической значимости (табл. 1).

Таблица 1

Показатели фрагментации ДНК у обследованных мужчин и женщин

В качестве граничного уровня ОА радона в воздухе был выбран уровень 74 Бк/м3, соответствующий 2 пКю/л воздуха. Средняя ОА радона составила 47 Бк/м3 в первой группе и 143 Бк/м3 во второй группе. Наибольшая информативность была установлена для показателя момента хвоста комет. Момент хвоста был повышен в группе с более высоким уровнем радона, но эта тенденция не достигла уровня статистической достоверности (табл. 2). Данная тенденция характерна только для обследованных мужчин.

Таблица 2

Показатели фрагментации ДНК в группах, дифференцированных по полу и ОА радона

ОА радона в воздухе помещений, Бк/м3	% ДНК в хвосте кометы	Длина хвоста, мкм	Момент хвоста кометы

	3,65	13,73	0,94
	3,97	14,52	1,43

	3,30	13,21	0,88
	3,00	11,95	0,72

	3,43	13,42	0,90
	3,51	13,30	1,09

Также была исследована возможная зависимость показателей ДНК от величины МАЭД гамма-излучения в жилых помещениях. Для проверки был рассчитан коэффициент корреляции между показателями повреждений ДНК и МАЭД гамма-излучения. Была обнаружена положительная корреляция показателей ДНК-комет с увеличением мощности гамма-излучения (рисунок). При этом МАЭД гамма-излучения находилась в пределах допустимых норм во всех обследованных помещениях.

Зависимость показателей фрагментации ДНК от МАЭД гамма-излучения в жилых помещениях (r - коэффициент корреляции Спирмена, p - вероятность «нулевой» гипотезы)

Обсуждение

Радиационное воздействие

Ионизирующее излучение способно индуцировать образование кластеров повреждения ДНК, что реализуется в форме двухцепочечных разрывов и другими повреждениями, расположенными компактно. Редко- и плотноионизирующее излучение вызывает примерно одинаковое количество отдельных ДНК-поражений на единицу поглощенной дозы, но в случае с плотноионизирующим излучением (альфа-частицы) эти поражения распределены в меньшем количестве участков ДНК, что подразумевает увеличение числа повреждений в кластере; например, среднее число повреждений по кластеру, как правило, увеличивается с увеличением линейной передачи энергии . Гамма-излучение, зафиксированное в местах проживания всех обследованных, не превышает регламентированных фоновых значений. Изменения гамма-фона, скорее всего, были вызваны особенностями строений и строительными материалами.

Анализ «комет»

Метод «ДНК-комет» представляет простой и быстрый тест, позволяющий эффективно измерять уровень повреждений ДНК и репарации повреждений, следующей после экспонирования. В данном исследовании не было обнаружено значительной гетерогенности в отношении уровня повреждения ДНК в исследованной популяции. В ряде работ, посвященных биологической дозиметрии, ранее отмечались трудности выявления эффекта малых доз облучения . В то же время в большинстве работ исследовались группы лиц, облученных внешним искусственным источником, например персонал радиологических и рентгенологических установок.

Измерения показателей фрагментации ДНК могут отражать как индивидуальный уровень повреждений ДНК, так и способность к репарации радиационных повреждений. Ранее в ряде работ установлена способность генов репарации модулировать частоту нарушений наследственного материала . Наблюдаемая картина повреждений ДНК является результатом равновесия между нарушениями и репарацией ДНК, и низкий уровень повреждений или отсутствие выраженных корреляций может быть результатом как низкого числа повреждений, так и высокой индивидуальной эффективности репарации .

По некоторым оценкам, наибольший вклад в увеличение показателей ДНК комет для непроизводственных факторов вносят сезон года (параметры увеличены летом) и медицинское облучение . В нашей работе эти факторы не могут оказывать значимого влияния, поскольку сбор биологического материала проводился в зимний период года, а все лица, проходившие рентгеновские обследования в течение 3 месяцев, предшествующих исследованию, были исключены из выборки. Отсутствие корреляций с объемной концентрацией радона, возможно, объясняется небольшим размером выборки. В дальнейшем планируется продолжение данной линии исследования с увеличением размера выборки.

Заключение

Исследование эффектов длительного воздействия малых доз облучения представляется сложной задачей, необходимость подбора выборок и контроля сопутствующих факторов способна исказить картину. В представленном исследовании не удалось выявить статистически значимых корреляций с показателями объемной активности радона, но в то же время обнаруженные корреляции с показателями гамма-фона указывают на перспективы данного исследования. Очевидна необходимость оценки фактора эффективности репарации обследованных для исследования такого типа, это позволило бы провести дифференцировку и сравнить людей с близкими характеристиками репарации.

Конфликты интересов, связанные с данным исследованием, отсутствуют.

Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ (№ 16-34-60069\15 мол_а_дк).

Библиографическая ссылка

Ларионов А.В., Волобаев В.П., Сердюкова Е.С. ИЗУЧЕНИЕ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ДНК-КОМЕТ У ЗДОРОВЫХ ДОНОРОВ В УСЛОВИЯХ РАЗЛИЧНЫХ РАДИАЦИОННЫХ ПАРАМЕТРОВ ЖИЛЫХ ПОМЕЩЕНИЙ // Современные проблемы науки и образования. – 2017. – № 6.;
URL: http://science-education.ru/ru/article/view?id=27215 (дата обращения: 01.02.2020). Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»

животные и их потомство постоянно пополняют и увеличивают количество бездомных собак и кошек, поэтому контроль их воспроизводства -одно из необходимых условий снижения количества бездомных, следовательно, нужно разработать правила содержания домашних животных;

Разработать регламент или инструкцию по отлову, транспортировке, стерилизации, содержанию, учету и регистрации безнадзорных животных;

При отлове собак нужно использовать современные средства сковывания движений биологических объектов и обездвиживания животных с помощью «летающего шприца» с применением неингаляционного наркоза;

Создать приюты для содержания безнадзорных собак и стационары для их стерилизации;

Эвтаназия нежизнеспособных животных в целях прекращения страданий должна осуществляться только ветеринарным врачом, работаю-

УДК 577.323:576.385(591+581)

щим в организациях, располагающих лицензией на лечебно-профилактическую деятельность.

Создать специальный крематорий для утилизации погибших безнадзорных животных и домашних питомцев, так как любые захоронения животных запрещены по санитарным нормам, такие кладбища рискуют стать рассадниками распространения инфекционных заболеваний.

Литература

1. Коли Г. Анализ популяций позвоночных. - М.: Мир, 1979. - 362 с.

2. Верещагин А.О., Поярков А.Д., Горячев К.С. Методы оценки численности бездомных собак в городе // Тез. докладов VI съезда Териологического общества. - М., 1999. - 47 с.

3. Челинцев Н.Г. Математические основы учета животных. - М., 2000. - 431 с.

Поступила в редакцию 22.03.2014

Использование метода «ДНК-комет» для детекции и оценки степени повреждений ДНК клеток организмов растений, животных и человека, вызванных факторами окружающей среды (обзор)

Э.В. Филиппов

Воздействие неблагоприятных факторов окружающей среды на любую биологическую систему (одноклеточные, растения, животные, человек) сопровождается накоплением повреждений ДНК и изменением активности систем репарации, что может привести к возникновению мутаций и патологических изменений клетки и целостного организма. В обзоре проведена оценка эффективности метода «ДНК-комет» для детекции повреждений ДНК, вызванных различными факторами окружающей среды: радиационными, неионизирующими излучениями, химическими, психическими (для человека). Описаны методологические и методические основы метода. Метод обладает чувствительностью, необходимой для регистрации повреждений ДНК на уровне отдельной клетки, и может быть применен для оценки интегральной целостности генома. Области применения метода «ДНК-комет»: оценка «качества жизни» любой биологической системы в тех или иных экологических условиях среды обитания; биомониторинг, медицина, в частности онкология, токсикология, фармакология, эпидемиология и многие другие.

Ключевые слова: повреждения ДНК, мутации, репарация, апоптоз, генотоксичность, инфекционные заболевания, онкология.

Influence of adverse factors of environment on any biological system (unicellular, plants, animals, human) is accompanied by accumulation of damages in cells DNA and change of reparation systems activity that may lead to emergence of mutations and pathological changes in cell and an integrated organism. The assessment of the efficiency of the «DNA comets» method for detection of DNA damages caused by various environmental factors - radioactive, not ionizing radiation, chemical, mental (for person) is presented in the review. Methodological and methodical bases of the method are described. The method has the sensitivity necessary for registration of DNA damages at the level of a cell, and can be applied for assessment of integrated integ-

ФИЛИППОВ Эдуард Васильевич - к.б.н.,с.н.с. ИБПК СО РАН, [email protected].

rity of a genome. Scopes of a method of «DNA comets»: assessment of «life quality» for any biological system in any ecological conditions of habitat; biomonitoring, medicine, in particular oncology, toxicology, pharmacology, epidemiology, etc.

Key words: DNA damages, mutation, reparation, apoptosis, genetic toxicity, infectious diseases, oncology.

В настоящее время хорошо известно, что при воздействии различных по природе (химических, физических и др.) факторов среды в диапазонах интенсивности воздействий, отличающихся от биологического оптимума жизнедеятельности, геном организмов подвергается негативному воздействию. Это может происходить как за счет прямого действия, например, в случае повреждения молекул ДНК ионизирующим излучением по принципу «мишени» , так и опосредованно, за счет образующихся в клетке свободных радикалов и активных форм кислорода . Большая часть образовавшихся в молекулах ДНК повреждений восстанавливается системами репарации, но если негативное давление велико, то повреждения накапливаются и это может приводить к закрепляемым мутациям, онкогенезу или гибели клеток. Образование повреждений ДНК является важным инициирующим событием в развитии патологических процессов в организме. В связи с этим особую актуальность приобретает детекция повреждений в структуре ДНК на ранних этапах, когда патологические процессы в организме еще не запущены и, соответственно, не могут быть диагностированы на физиологическом уровне. Несмотря на большое разнообразие используемых в науке методов исследования структуры ДНК, не все они обладают чувствительностью и специфичностью, достаточными для мониторинга повреждений ДНК, позволяющими оценить патогенетическое действие факторов in vivo.

Сравнительно недавно был разработан метод анализа поврежденности ДНК, применимый как in vitro, так и in vivo. Он получил название метода «ДНК-комет» (DNA-comet assay; метод гель-электрофореза ДНК отдельных клеток) , впервые был описан Ostling и Johansson в 1984 г. . Усовершенствования и модификации метода «ДНК-комет» позволили значительно повысить его чувствительность и расширить сферу применения .

Достаточно широкий обзор применений метода в различных областях медицинской науки проведен в работе . В настоящее время метод широко используется в исследованиях геноток-сичности химических веществ, активности систем репарации ДНК и апоптоза, в клинических исследованиях по пренатальной диагностике, предрасположенности к онкологическим заболеваниям, контролю эффективности терапии

при раке, катаракте и т.д. Метод «ДНК-комет» становится неотъемлемой частью программ по биомониторингу - оценке влияния на организм пищевого рациона, факторов внешней среды, включая ионизирующую радиацию и «электромагнитный смог», изменений метаболизма и физиологического состояния, старения организма, накопления и репарации повреждений ДНК; исследований по экологии. Использование метода «ДНК-комет» позволяет изучать накопление повреждений ДНК и активность систем её репарации практически в любых эукариотических клетках, например, клетках цианобактерий, растений, животных, человека.

В основе метода лежит проведение гель-электрофореза единичных лизированных клеток. При этом молекулы ДНК распределяются в порах геля под воздействием электрического поля, а треки ДНК визуализируют посредством окрашивания флуоресцентным красителем, после чего образцы изучают микроскопически. При наличии разрывов ДНК нарушается структурная организация хроматина и утрачивается сверх-спирализация ДНК, что приводит к ее релаксации, формируются фрагменты ДНК. В электрическом поле релаксированные петли и фрагменты ДНК вытягиваются по направлению к аноду, что и придает наблюдаемым объектам вид «комет» (отсюда и происхождение названия «comet assay«, ставшее общеупотребительным). «Кометы» анализируют либо путем визуального наблюдения и их дифференциации по степени по-врежденности ДНК, либо с использованием компьютерных программных средств обработки изображений.

В настоящее время большинство лабораторий, внедривших данный методический подход в исследования, разработали многочисленные вариации протокола, в частности, по продолжительности и условиям лизиса клеток, денатурации, электрофореза и окрашивания ДНК. Методические аспекты особенностей использования вариаций метода достаточно полно изложены в работах . Общая схема метода включает подготовку суспензии исследуемых клеток, получение гель-слайдов с подложкой из агарозы, помещение клеток в агарозный гель, нанесение на гель-слайды, лизис, щелочную денатурацию в щелочной версии метода, электрофорез, фиксацию/нейтрализацию, окрашивание и микроскопический анализ (рис. 1).

Рис. 1. Схема применения метода «ДНК-комет»

Подготовка клеточных суспензий - один из ключевых этапов метода «ДНК-комет». При этом используется ряд методик получения изолированных клеток: ферментативная обработка протеазами (трипсин, коллагеназа), механическая дезагрегация тканей, сепарация на мембранах или гомогенизация .

При оценке генотоксичности факторов среды на животные организмы методом «ДНК-комет» in vitro используют традиционно применяемые в генотоксикологических исследованиях клетки первичных и перевиваемых клеточных культур человека (лимфоциты периферической крови и фибробласты человека, карцинома шейки матки HeLa, карцинома легкого А-549, карцинома гортани Hep2 и др.) . Tomás Gichner с соавт. при исследовании действия тяжелых металлов на растения инкубировали проростки в среде с солями кадмия, затем клетки кончиков корешков и листьев проростков отделяли и перемещали в буферный раствор, иммобилизовывали в слайды, лизировали и исследовали в щелочной и нейтральной версии метода «ДНК-комет» . Различные вариации на данном этапе исследования не ограничены и зависят только от постановки задач и цели исследований.

Приготовление микропрепаратов и лизис.

Гель-слайды представляют собой стёкла с нанесённой подложкой из агарозы с нормальной точкой плавления. Традиционно используются применяемые в микроскопии предметные стёкла с матовой полосой для нанесения надписей на 1/4 поверхности. Исследуемые клетки иммобилизуются в низкоплавкой агарозе и наносятся на стекла. В процессе лизиса под действием высокой концентрации №С1 и детергента происходит диссоциация клеточных структур; де-протеинизированная ДНК заполняет образованную клеткой полость в агарозе.

Щелочная денатурация и электрофорез. В нейтральной версии метода после лизиса микропрепараты подвергают электрофорезу в нейтральном буфере, в процессе которого ДНК в виде нитей и петель двунитевой ДНК мигрирует в порах агарозы к аноду, формируя электрофо-ретический хвост. В щелочной версии метода дополнительный этап щелочной денатурации и сам электрофорез проводят в щелочной среде (рН>13). Во время щелочной денатурации ДНК переходит в однонитевую форму, щёлочно-лабильные сайты реализуются в однонитевые разрывы. В процессе электрофореза в том же буфере образовавшаяся однонитевая ДНК и фрагменты ДНК мигрируют к аноду, образуя хвост комет, в котором после нейтрализации/фиксации случайным образом ренатурируют в дву-нитевую ДНК.

Таким образом, использование щелочного варианта метода «ДНК-комет» позволяет оценивать, главным образом выход однонитевых разрывов и щелочелабильных сайтов, так как при использовании данного протокола двунитевые разрывы составляют менее 5% общего выхода повреждений ДНК . Методом «ДНК-комет», проводимым в нейтральных условиях среды, детектируют преимущественно двунитевые разрывы ДНК .

Микроскопирование и анализ. Микропрепараты после проведения нейтрализации/фиксации и окрашивания слайдов анализируются на эпифлуоресцентном микроскопе с соответствующими красителю фильтрами при 200-400-кратном увеличении в зависимости от типа клеток. Анализ ДНК-комет может проводиться визуально или с помощью программно-аппаратного комплекса. При визуальном способе ДНК-кометы ранжируют на пять условных типов (рис. 2,А) с соответствующим для каждого числовым значением от 0 до 4.

Степень повреждённости ДНК при этом выражается как индекс ДНК-комет (ИДК), определяемый по формуле:

CC4SP - -~-TJДи1У1

№ Ш» V*- АН-™ цуАь- 1»

б fe££ Ф ___1

Рис. 2. ДНК-кометы клеток с различной степенью повреждённости ДНК (А) и анализ их цифровых изображений в программной среде CASP (Б). Указаны числовые значения для каждого типа ДНК-комет, используемые при визуальном анализе микропрепаратов

ИДК = (0xn0 + 1xnj + 2xn2 + 3xn3 + 4xn4) / I,

где n0-n4 - число ДНК-комет каждого типа, I -сумма проанализированных ДНК-комет.

Программно-аппаратный комплекс состоит из совмещённой с микроскопом высокочувствительной CCD-камеры и специализированного программного обеспечения, что позволяет проводить цифровую регистрацию и обработку параметров ДНК-комет, характеризующих целостность структуры ДНК: длину ДНК-комет, длину хвоста, диаметр головы, процентное содержание ДНК в голове или хвосте (% ДНК) и т.д. (рис. 2,Б). В качестве показателя повреждённости ДНК чаще всего используют длину хвоста, процентное содержание ДНК в хвосте или их произведение - так называемый «момент хвоста» (tail moment). Отмечается высокая степень корреляции результатов визуального и программно-аппаратного методов анализа ДНК-комет .

Оценка клеточной гибели. В микропрепаратах ДНК-комет часто выявляют атипичные ДНК-кометы с отсутствующей или практически отсутствующей головой и широким диффузным хвостом, получившие название ghost cells или hedgehogs . Их выделяют в отдельную категорию и исключают из общего анализа, по-

скольку ДНК в хвосте таких комет представлена в виде коротких дискретных фрагментов (рис. 3,А).

Предполагали, что такие ДНК-кометы могут формировать апоптотические клетки, находящиеся на стадии фрагментации хроматина, что и подтвердилось экспериментально .

ДНК-кометы сходной морфологии обнаруживают при анализе клеток, подвергшихся действию цитотоксических агентов, например перекиси водорода (рис. 3,Б). Механизм их возникновения неясен, предполагается, что фрагментация ДНК возникает вследствие «окислительного стресса» и атаки молекулы ДНК активными формами кислорода . Бимодальное распределение таких атипичных ДНК-комет и ДНК-комет с низким уровнем поврежденности ДНК свидетельствует о цитотоксическом эффекте. ДНК-кометы некротических клеток имеют иную морфологию. Это широкие, часто неправильной формы ДНК-кометы с трудно дифференцируемыми головой и хвостом (рис. 3,В).

Таким образом, метод «ДНК-комет» позволяет определить одновременно с ДНК-повреждениями апоптогенную и цитотоксическую активность исследуемых агентов. Возможности метода не ограничиваются определением разрывов

Рис. 3. ДНК-кометы апоптотических (А, обозначены символом*), цитотоксических (Б, обозначены символом *) и некротических (В, указаны стрелкой) клеток. Окраска SYBR Green I, увеличение х200

ДНК как интегрального показателя их повреж-дённости. При соответствующей модификации с помощью данного метода можно специфично оценивать различные типы повреждений ДНК, значительно расширяя его применимость.

Оценка модифицированных оснований ДНК. Модификация метода «ДНК-комет» для оценки повреждённых оснований в ДНК носит название Comet FLARE (Fragment Length Analysis using Repair Enzymes). Его суть заключается в обработке ДНК лизированных клеток на микропрепаратах специфическими ферментами репарации, которые вносят разрывы в ДНК в местах локализации повреждённых оснований .

С помощью фермента формамидопиримидин-ДНК-гликозилазы (Fpg) оценивают уровень окисленного гуанина (8-oxoGua, FapyGua), фор-мамидопиримидинов - пиримидиновых оснований с разомкнутым кольцом, а также ряда алки-лированных оснований . Применение глико-

зилазы hOGG1 позволяет специфично определять 8-oxoG . Также разработаны протоколы для оценки в ДНК пиримидиновых димеров с помощью пиримидин-димер-гликозилаз (Т4-PDG или cv-PDG) , 6,4-фотопродуктов с применением S. РотЬе UVDE и ошибочно спаренного урацила с использованием урацил-ДНК-гликозилазы (UDG) .

Оценка сшивок ДНК-ДНК и ДНК-белок. Для определения наличия сшивок ДНК-белок, ДНК-лизированные клетки обрабатывают про-теиназой К. Это приводит к увеличению элек-трофоретической подвижности ДНК в геле вследствие разрушения сшивок между ДНК и не деградированными в процессе лизиса гистоно-выми белками. По соотношению показателей с обработкой ферментом и без неё определяют процентное содержание сшивок в ДНК .

Для оценки сшивок ДНК-ДНК микропрепараты после лизиса подвергают действию радиации или высоких концентраций перекиси водорода , что увеличивает исходную повреждённость ДНК. При этом ДНК, содержащая сшивки ДНК-ДНК, в процессе электрофореза мигрирует в меньшей степени. По соотношению изменения подвижности контрольной и исследуемой ДНК после обработки вычисляется процент сшивок ДНК-ДНК .

Оценка метилирования ДНК. Для оценки методом «ДНК-комет» уровней метилирования ДНК используют чувствительную к метилированию внутреннего цитозина в последовательности CCGG рестриктазу Нра11 и не чувствительную к этому типу метилирования рестриктазу МspI. Процент метилирования CpG-островков ДНК определяется по формуле:

100 - [(Нра11^р1) 100],

где HpaИ/МspI - процентное содержание ДНК в хвосте после обработки ДНК лизированных клеток соответствующей рестриктазой.

Опыты показывают высокое сходство результатов с данными, полученными традиционным методом оценки метилирования по включению меченого цитозина . В цитируемой работе была использована щелочная версия метода. В экспериментах показано , что применение нейтрального электрофореза для данной модификации метода «ДНК-комет» более приемлемо, поскольку рестриктазы вносят в ДНК исключительно двойные разрывы.

Применение метода «ДНК-комет» в изучении генотоксического действия химических веществ. Возможности метода «ДНК-комет», его преимущества и недостатки наглядно продемонстрированы в работе по исследованию ге-нотоксичности 208 химических соединений, вы-

бранных из различных групп канцерогенных веществ по классификации Международного агентства по исследованию рака и Национальной токсикологической программы США . Тестирование проводилось на мышах (8 органах) и продемонстрировало преимущества этого метода, связанные с возможностью определять повреждения ДНК в любом органе, независимо от степени митотической активности в нем. Результаты тестирования показали, что метод обладает наибольшей эффективностью при определении фрагментации молекул ДНК, образующихся как в результате однонитевых разрывов, индуцированных химическими веществами, так и из щелочелабильных сайтов, возникающих при алкилировании оснований и образовании аддуктов ДНК. Сравнение метода «ДНК-комет» с тестом Эймса, который является общепризнанным методом для скрининга генотоксичных веществ, выявило высокую степень корреляции результатов, полученных при тестировании канцерогенных и неканцерогенных соединений. Исследования канцерогенности веществ (показавших по тесту Эймса отрицательный результат) методом «ДНК-комет» показали, что половина из них генотоксичны. Последнее указывает на ограничения обоих методов, ещё раз свидетельствуя о том, что методы, которые позволяют выявлять повреждения ДНК, мало подходят для идентификации негенотоксичных канцерогенов. Очевидно, что не существует одного метода, способного выявлять все генотоксические воздействия. Поэтому общепринятым является использование набора тестов in vivo и in vitro.

Заключение

Метод «ДНК-комет» имеет ряд существенных преимуществ по сравнению с другими методами оценки повреждённости ДНК. Это - высокая чувствительность, возможность регистрации повреждений ДНК в клетках любых тканей in vivo, минимальное количество требуемого экспериментального материала, относительно низкая стоимость, высокая «пластичность», позволяющая при незначительных модификациях использовать метод для селективной регистрации различных категорий повреждений ДНК и связанных событий. Привлекает быстрота проведения экспериментов и относительная простота лабораторного протокола. Сегодня имеется единое мнение о необходимости включения метода «ДНК-комет» в качестве индикаторного теста в систему экспертной оценки генотоксичности in vitro и in vivo. В России данный метод вошёл в состав ряда методических рекомендаций и указаний .

Дополнительно следует указать на перспективу применения метода «ДНК-комет» в качестве индикаторного теста в эпидемиологических, различного рода экспериментальных и клинических исследованиях при изучении этиопатоге-нетической роли первичных повреждений ДНК, а также для оценки «качества жизни» биологической системы в тех или иных экологических условиях среды обитания.

Стандартизация процедур выполнения метода «ДНК-комет» принципиальна для обеспечения сходимости результатов, получаемых различными исследователями, и предупреждения ситуаций, порождающих в опытах неопределённые и/или ложные данные.

Литература

1. Кузин А.М. Структурно-метаболическая теория в радиобиологии. - М.: Наука, 1986. - 283 с.

2. Меерсон Ф.З. Адаптация, стресс и профилактика. - М.: Наука, 1981. - 278 с.

3. The comet assay in toxicology / Dhawan A. and Anderson D. (Eds.); RSC Publisher, UK, London, 2009.

4. Collins A.R. The comet assay for DNA damage and repair: principles, applications and limitations // Mol Biotech. - 2004. - V. 26. - P. 229-261.

5. Ostling O., Johanson K.J. Microelectrophoretic study of radiation-induced DNA damage in individual mammalian cells. Biochem Biophys Res Commun. -1984. - 123. - С. 291-298.

6. Olive P.L., Banath J.P. The comet assay: a method to measure DNA damage in individual cells // Nat Protoc. - 2006. - 1 (1). - С. 23-29.

7. Сорочинская У.Б., Михайленко В.М. Применение метода «ДНК-комет» для оценки повреждений ДНК, вызванных различными агентами окружающей среды // Онкология. - 2008. - Т.10, №3. - С. 303-309.

8. Дурнев А.Д., Жанатаев А.К., Анисина Е.А. и др. Применение метода щелочного гель-электрофореза изолированных клеток для оценки генотоксических свойств природных и синтетических соединений: методические рекомендации. - М., 2006. - 28 с.

9. Жанатаев А.К., Никитина В.А., Воронина Е.С., Дурнев А.Д. Методические аспекты оценки ДНК-повреждений методом «ДНК-комет» // Прикладная токсикология. - 2011. - Т.2, №2 (4). - С. 28-37.

10. Hartmann A. et al. Recommendations for conducting the in vivo alkaline comet assay // Mutagenesis. -2003. - V. 18. - Р. 45-51.

11. Kumaravel T.S., Vilhar B., Stephen P. et al. Comet Assay measurements: a perspective // Cell Biol. Toxicol. - 2009. - 25 (1). - P. 53-64.

12. Оценка генотоксических свойств методом «ДНК-комет» in vitro: методические рекомендации. - М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспо-требнадзора, 2010.

13. Tomás Gichner, Zde^nka Patková, Ji"rina Száko-vá, Kate"rina Demnerová. Cadmium induces DNA damage in tobacco roots, but no DNA damage, somatic mutations or

homologous recombination in tobacco leaves // Mutation Research. - 2004. - 559. - C. 49-57.

14. Olive PL. DNA damage and repair in individual cells: applications of the comet assay in radiobiology // Int J Radiat Biol. - 1999. - 75. - C. 395-405.

15. Xie H., Wise S.S., Holmes A.L. et al. Carcinogenic lead chromate induces DNA double-strand breaks in human lung cells // Mutat Res. - 2005. - 586 (2). -C. 160-172.

16. Yasuhara S., Zhu Y., Matsui T. et al. Comparison of comet assay, electron microscopy and flow cytometry for detection of apoptosis // Journal Histochem. Cytochem. - 2003. - 51 (7). - P. 873-885.

17. Olive P.L., Banath J.P. Sizing highly fragmented DNA in individual apoptotic cells using the comet assay and a DNA crosslinking agent // Exp. Cell Res. - 1995. -221 (1). - P. 19-26.

18. Collins A.R., Duthie S.J. and Dobson V.L. Direct enzymic detection of endogenous oxidative base damage in human lymphocyte DNA // Carcinogenesis. - 1993. -14. - P. 1733-1735.

19. Collins A.R., Dusinska M. and Horska A. Detection of alkylation damage in human lymphocyte DNA with the comet assay // Acta Biochim. Polon. - 2001. -48. - P. 611-614.

20. Smith C.C., O"Donovan M.R. and Martin E.A. HOGG1 recognizes oxidative damage using the comet assay with greater specificity than FPG or ENDOIII // Mutagenesis. - 2006. - 21. - P. 185-190.

21. Dusinska M. and Collins A. Detection of lbumin purines and UV-induced photoproducts in DNA of single cells, by inclusion of lesion specific enzymes in the comet assay // Altern. Lab. Anim. - 1996. - 24. - P. 405-411.

22. Duthie S.J. and McMillan P. Uracil misincorpo-ration in human DNA detected using single cell gel electrophoresis // Carcinogenesis. - 1997. - 18. - P. 1709-1714.

23. Merk O., Speit G. Detection of crosslinks with the comet assay in relationship to genotoxicity and cytotoxicity // Environ. Mol. Mutagen. - 1999. - 33 (2). -P. 167-172.

24. Spanswick V.J., Hartley J.M., Hartley J.A. Measurement of DNA interstrand crosslinking in individual cells using the single cell gel electrophoresis (comet) assay // Methods Mol. Biol. - 2010. - 613. - P. 267-282.

25. Hartley J.M., Spanswick V.J., Gander M. et al. Measurement of DNA cross-linking in patients on ifosfa-mide therapy using the single cell gel electrophoresis (comet) assay // Clin. Cancer Res. - 1999. - 5. - P. 507512.

26. Wentzel J.F., Gouws C., Huysamen C. et al. Assessing the DNA methylation status of single cells with the comet assay // Anal. Biochem. - 2010. - 400 (2). -P. 190-194.

27. The National Toxicology Program, Report on Carcinogens. - 2007; Eleventh edition.

28. Sasaki YF, Sekihashi K, Izumiyama F. et al. The comet assay with multiple mouse organs: comparison of comet assay results and carcinogenicity with 208 chemicals selected from the IARC monographs and US NTP Carcinogenicity Database // Crit Rev Toxicol. - 2000. -30 (6). - С. 629-799.

29. Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов: методические указания. - М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2009.

Поступила в редакцию 25.02.2014

УДК 636.082.12

Изменчивость полиморфизма белков крови лошадей табунных пород Якутии

А.В. Чугунов, Н.П. Филиппова, М.Н. Халдеева, Н.П. Степанов

Проведено изучение аллелофонда якутской, мегежекской и приленской пород табунных лошадей по двум полиморфным системам крови, установлена степень генетических различий по типам транс-феррина и альбумина между популяциями лошадей разных районов Республики Саха (Якутия). У лошадей изученных пород отмечен недостаток гетерозиготных генотипов, на что указывает положительное значение Fis. Исследование показало, что популяции табунных лошадей трех пород находятся в устойчивом генном равновесии по двум локусам.

Ключевые слова: аллелофонд, полиморфные системы крови, локус, якутская, мегежекская, прилен-ская породы лошадей.

Allele pool of herd horses of the Yakut, Megezheksky and Prilensky breeds on two polymorphic blood systems is studied. The degree of genetic distinctions on transferrin and albumin types between populations of

ЧУГУНОВ Афанасий Васильевич - д.с.-х.н., проф. ЯГСХА, [email protected]; ФИЛИППОВА Наталья Павловна -к.б.н., доцент ЯГСХА, [email protected]; ХАЛДЕЕВА Матрена Николаевна - к.с.-х.н., ст. преподаватель ЯГСХА, [email protected]; СТЕПАНОВ Николай Прокопьевич - к.с.-х.н., доцент каф. ЯГСХА, [email protected].

Способ заключается в том, что в компьютер с биологического препарата, установленного на флуоресцентный микроскоп с видеокамерой, вводят изображение с кометоподобными объектами - «кометами», представляющими собой набор слитых и отдельностоящих флуоресцирующих точек разной яркости. Затем выполняют поиск этих «комет» на изображении, выделяют их контур с определением границы «головы» и «хвоста» и проводят микроскопическую морфометрию. Перед поиском «комет» на изображении выполняют оптимизацию уровней яркости изображения и низкочастотную фильтрацию с целью объединения отдельных точек «комет» в размытые области. Затем выполняют сегментацию полученного изображения на основе порога яркости, определяемого как смещение от фона, нахождение контуров «комет» методом заполнения ограниченной области «с затравкой», где под затравкой понимается произвольная точка, принадлежащая «комете», нахождение центра головы каждой «кометы», путем определения центра тяжести точек с интенсивностью свечения, близкой к максимальной. Определение виртуальной границы «головы» и «хвоста» проводят путем зеркального отражения распределения интенсивностей свечения точек передней части головы кометы, затем проводят микроскопическую морфометрию «комет», путем измерения: длины «кометы», «хвоста», диаметра «головы». Затем вычисляют процентное содержание ДНК во всей «комете», в «хвосте» и меры поврежденности ДНК. Перечисленные операции осуществляют автоматически, одновременно над всеми «кометами» на серии изображений. Технический результат заключается в повышении точности и скорости обработки и анализа изображений «комет».

Способ обработки и анализа изображений кометоподобных объектов, полученных методом «ДНК-комет» (comet assay или single cell gel electrophoresis - SCGE), в биологических препаратах, относится к области обработки и анализа изображений объектов - «комет», и предназначен для компьютеризации (автоматизации) процессов морфометрических исследований в области биомедицины, проводимых для определения степени повреждений молекул ДНК, вызванных различными агентами окружающей среды, для изучения репарации молекул ДНК на уровне одиночных клеток, для оценки интегральной целостности генома, для определения индивидуальной радиочувствительности онкологических больных, проходящих курс лучевой терапии, для биоиндикации прибрежных морских вод, иными словами для мониторинга широкого спектра повреждений ДНК, вызванных мутагенными факторами окружающей среды.

Изображения «комет» представляют собой набор слитых и отдельностоящих флуоресцирующих точек разной яркости, полученных методом гельэлектрофореза лизированных единичных клеток (метод «ДНК-комет»), поэтому обрабатывать и анализировать их способами, предназначенными для изображений обычных (сплошных) объектов, нет возможности.

В настоящее время изображения «ДНК-комет» анализируют либо путем визуального наблюдения под флуоресцентным микроскопом и дифференциации их по степени поврежденности ДНК, либо с использованием компьютерных средств обработки изображений.

При визуальном анализе (Struwe М, Greulich K, Suter W, Plappert-Helbig U. The photo comet assay - A fast screening assay for the determination of photogenotoxicity in vitro. // Mutation Research / Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. 2007, 632 (1-2), p.44-57) «ДНК-кометы» ранжируют на пять условных типов с соответствующим числовым значением от 0 до 4. Степень поврежденности ДНК при этом выражается как индекс «ДНК-комет» (И днк), определяемый по формуле

И днк =(0n 0 +1n 1 +2n 2 +3n 3 +4n 4)/ ,

где n 0 -n 4 - число «ДНК-комет» каждого типа, - сумма подсчитанных «ДНК-комет».

Данный способ обработки и анализа очень трудоемок, субъективен, имеет только пять уровней градации дифференциации «ДНК-комет» и поэтому имеет невысокую точность, а отсюда и низкую достоверность результатов.

Наиболее близким к предлагаемому техническому решению является способ компьютерного анализа изображений «ДНК-комет», реализованный в программном обеспечении SCGE-Pro (см. Chaubery R.С. Computerized Image analysis software for the comet assay. Methods In Molecular Biology 2005; 291:97-106), принятый за прототип. Данный способ анализа «комет» менее трудоемок и особенно необходим для объективной оценки их параметров (например, длины «кометы», длины «хвоста», диаметра «головы», процентного содержания ДНК в «голове» или в «хвосте» и т.д.), которые используются в качестве показателей, характеризующих уровень повреждений ДНК в изучаемых клетках. Способ позволяет находить «кометы» на изображении и вычислять их параметры как в ручном, так и в автоматическом режиме.

Недостатком известного способа является способ определения границ «кометы» с помощью прямоугольной области, который снижает точность вычисления параметров, необходимых для оценки повреждений (особенно, если повреждения слабо выражены) ДНК, так как в этом случае к комете могут быть отнесены и помехи, находящиеся рядом. Кроме того, при данном способе анализа граница «головы» и «хвоста» определяется как прямая, перпендикулярная оси «кометы» и разделяющая комету на «голову» и «хвост», что сильно снижает точность вычисления длины «хвоста кометы» и процентного содержания ДНК в «голове» и в «хвосте».

Техническим результатом изобретения является повышение точности и скорости обработки и анализа изображений «комет», полученных методом «ДНК-комет», включая фильтрацию, сегментацию «комет», выделение их контура с определением границы «головы» и «хвоста», что позволяет повысить достоверность результатов при микроскопической морфометрии, необходимой для компьютеризации процессов биометрических исследований, проводимых при мониторинге широкого спектра повреждений ДНК, вызванных различными мутагенными факторами окружающей среды.

Технический результат достигается тем, что способ обработки и анализа изображений кометоподобных объектов, полученных методом «ДНК-комет», заключающий в том, что в компьютер с биологического препарата, установленного на флуоресцентный микроскоп с видеокамерой, вводят изображение с кометоподобными объектами - «кометами», представляющими собой набор слитых и отдельностоящих флуоресцирующих точек разной яркости, выполняют поиск этих «комет» на изображении, выделяют их контур с определением границы «головы» и «хвоста», проводят микроскопическую морфометрию, при этом перед поиском «комет» на изображении выполняют оптимизацию уровней яркости изображения и низкочастотную фильтрацию с целью объединения отдельных точек «комет» в размытые области, затем выполняют сегментацию полученного изображения на основе порога яркости, определяемого как смещение от фона, нахождение контуров «комет» методом заполнения ограниченной области «с затравкой», нахождение центра «головы» каждой «кометы», путем определения центра тяжести точек с интенсивностью свечения, близкой к максимальной, определение виртуальной границы «головы» и «хвоста», путем зеркального отражения распределения интенсивностей свечения точек передней части «головы кометы», затем проводят микроскопическую морфометрию «комет», путем измерения: длины «кометы», «хвоста», диаметра «головы» и вычисления процентного содержания ДНК во всей «комете», «в хвосте», меры поврежденности ДНК и многие другие параметры, характеризующие степень поврежденности ДНК в зависимости от решаемой задачи, причем перечисленные операции осуществляются автоматически, одновременно над всеми «кометам» на изображении или серии изображений.

Способ осуществляется путем выполнения последовательности следующих процедур:

1. Ввод в компьютер с биологического препарата, установленного на флуоресцентный микроскоп с видеокамерой, изображения с кометоподобными объектами - «кометами», представляющими собой набор слитых и отдельностоящих флуоресцирующих точек разной яркости.

2. Оптимизация уровней яркости изображения. Нулевая яркость - фон, максимальная яркость - центр головы «кометы».

3. Низкочастотная фильтрация по Гауссу (размытие) с большим радиусом, равным 1/10 радиуса средней «кометы», выполняется с целью объединения отдельных точек «комет» в размытые области. Для предотвращения слияния «комет», расположенных близко друг к другу, в интерактивном режиме используется корректировка радиуса размытия.

4. Сегментация полученных размытых областей выполняется на основе порога яркости. Порог определяется автоматически как смещение от фона (в изображении нет посторонних включений и других объектов кроме «комет»), но возможна коррекция порога в интерактивном режиме.

5. Нахождение контуров «комет» методом заполнения ограниченной области «с затравкой», где под затравкой понимается произвольная точка, принадлежащая «комете».

Нахождение центра «головы кометы». Для определения могут использоваться два метода: по максимуму распределения интенсивности свечения точек «кометы» вдоль горизонтальной оси или по центру тяжести точек с интенсивностью свечения, превышающей 80% от максимума.

Определение виртуальной границы «головы» и «хвоста», путем зеркального отражения распределения интенсивностей свечения точек передней части «головы кометы» (передняя часть - это часть до передней границы головы «кометы»).

Выполнение микроскопической морфометрии «комет», путем измерения: длины «кометы», длины «хвоста», диаметра «головы» и вычисления процентного содержания ДНК во всей «комете», «в хвосте», меры поврежденности ДНК и многие другие параметры, характеризующие степень поврежденности ДНК в зависимости от решаемой задачи.

9. Вывод значений полученных параметров каждой кометы выполняется в таблицу MS EXCEL для реализации постановки задачи пользователя, например для дальнейшего статистического анализа либо классификации «комет» по степени повреждения структуры ДНК.

Таким образом, в предлагаемом способе каждая область кометы определяется их сложным контуром, что повышает точность вычисления параметров, в отличие от известного способа, где границы «комет» определяются с помощью прямоугольной области, которая снижает точность вычисления параметров, необходимых для оценки повреждений (особенно, если повреждения слабо выражены) «ДНК-комет», так как в этом случае к «комете» могут быть отнесены и помехи, находящиеся рядом. Кроме того, в известном способе граница «головы» и «хвоста» определяется как прямая, перпендикулярная оси кометы и разделяющая комету на «голову» и «хвост». В предлагаемом способе применяется виртуальная граница, определяемая путем вычисления центра «головы кометы» и зеркального отражения распределения интенсивности свечения точек передней части «головы кометы». Это существенно повышает точность вычисления длины хвоста кометы и процентного содержания ДНК в «голове и в хвосте».

Следует отметить, что все перечисленные операции выполняются автоматически одновременно над всеми «кометами» на изображении или серии изображений.

ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ

Способ обработки и анализа изображений кометоподобных объектов, полученных методом «ДНК-комет», заключающийся в том, что в компьютер с биологического препарата, установленного на флуоресцентный микроскоп с видеокамерой, вводят изображение с кометоподобными объектами - «кометами», представляющими собой набор слитых и отдельностоящих флуоресцирующих точек разной яркости, выполняют поиск этих «комет» на изображении, выделяют их контур с определением границы «головы» и «хвоста», проводят микроскопическую морфометрию, отличающийся тем, что перед поиском «комет» на изображении выполняют оптимизацию уровней яркости изображения и низкочастотную фильтрацию с целью объединения отдельных точек «комет» в размытые области, затем выполняют сегментацию полученного изображения на основе порога яркости, определяемого как смещение от фона, нахождение контуров «комет» методом заполнения ограниченной области «с затравкой», где под затравкой понимается произвольная точка, принадлежащая «комете», нахождение центра головы каждой «кометы» путем определения центра тяжести точек с интенсивностью свечения, близкой к максимальной, определение виртуальной границы «головы» и «хвоста» путем зеркального отражения распределения интенсивностей свечения точек передней части головы кометы, затем проводят микроскопическую морфометрию «комет» путем измерения длины «кометы», «хвоста», диаметра «головы» и вычисления процентного содержания ДНК во всей «комете», в «хвосте» и меры поврежденности ДНК, причем перечисленные операции осуществляют автоматически, одновременно над всеми «кометами» на серии изображений.